СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ ВЛИЯНИЯ КОМБИНАЦИЙ БИОПРЕПАРАТОВ НА УКОРЕНЯЕМОСТЬ ЧЕРЕНКОВ СМОРОДИНЫ КРАСНОЙ (RIBES RUBRUM L.)

СРАВНИТЕЛЬНЫЙ АНАЛИЗ ВЛИЯНИЯ КОМБИНАЦИЙ БИОПРЕПАРАТОВ НА УКОРЕНЯЕМОСТЬ ЧЕРЕНКОВ СМОРОДИНЫ КРАСНОЙ (RIBES RUBRUM L.)

Научная статья

Ладыженская О.В.^1, *, Аниськина Т.С.², Крючкова В.А.³

¹ ORCID: 0000-0002-8086-8891;

² ORCID: 0000-0002-0933-1020;

³ ORCID: 0000-0003-1066-3978;

^{1, 2, 3} Главный Ботанический Сад им. Н.В.Цицина РАН, Москва, Россия;

³ Российский государственный аграрный университет — МСХА им. К. А. Тимирязева, Москва, Россия

* Корреспондирующий автор (o.ladyzhenskaya91[at]mail.ru)

Аннотация

Смородина красная (Ribes rubrum L.) – ценная ягодная культура, которую выращивают с целью получения ягод для свежего рынка и продукции переработки (сок/пюре), однако возникает проблема в количестве посадочного материала для создания промышленных плантаций. Следовательно, целью исследования является проведение сравнительного анализа влияния биопрепаратов на укореняемость черенков и параметры корневой системы. Объектами исследования являются сорта смородины красной – Голландская розовая и Ненаглядная. Рассмотрено два варианта комбинаций биопрепаратов - МИКС ТРИКС Триходерма + вода и МИКС ТРИКС Триходерма + МИКС ТРИКС Псевдоманада. Исследования проводили в 2021 году в Московском регионе. Установлено, что комбинация с Pseudomonas fluorescens дает лучшие результаты по укореняемости (77% для сорта Голландская розовая и 80% - для сорта Ненаглядная), по выровненности объема корневой системы (34,7% вариации у сорта Голландская розовая и 36,3% - у сорта Ненаглядная), по длине корневой системы (в среднем по сортам 10,6 см). Двухфакторный дисперсионный анализ показал достоверное влияние применения препаратов и сортовых особенностей на объем корневой системы (81% и 11% соответственно), а на длину корней достоверно влияет только применение препаратов (доля влияния составляет 93%).

Ключевые слова: красная смородина, Ribes rubrum, черенкование, размножение, укореняемость, биопрепараты, Trichoderma viride, Pseudomonas fluorescens.

A COMPARATIVE ANALYSIS OF THE EFFECT OF COMBINATIONS OF BIOLOGICAL PREPARATIONS ON THE ROOTING ABILITY OF REDCURRANT CUTTINGS (RIBES RUBRUM L.)

Research article

Ladyzhenskaya O.V.^1, *, Aniskina T.S.², Kryuchkova V.A.³

¹ ORCID: 0000-0002-8086-8891;

² ORCID: 0000-0002-0933-1020;

³ ORCID: 0000-0003-1066-3978;

^{1, 2, 3} Tsytsin Main Moscow Botanical Garden of Academy of Sciences, Moscow, Russia;

³ Moscow Timiryazev Agricultural Academy, Moscow, Russia

* Corresponding author (o.ladyzhenskaya91[at]mail.ru)

Abstract

Redcurrant (Ribes rubrum L.) is a valuable crop that is grown in order to obtain berries for the fresh market and processed products (juice/puree), however, there is a problem in the amount of planting material for the creation of industrial plantations. In light of this fact, the study attempts to conduct a comparative analysis of the effect of biological products on the rooting ability of cuttings and the parameters of the root system. The research examines varieties of red currant –Ribes rubrum and Nenaglyadnaya. Two variants of combinations of biological products are examined: MIKS TRIKS Trichoderma + water and MIKS TRIKS Trichoderma +MIKS TRIKS Pseudomanada. The research was conducted in Moscow Oblast in 2021. It is established that the combination of Pseudomonas fluorescens demonstrates the best results for rooting ability (77% for varieties of Ribes rubrum and 80% for Nenaglyadnaya), in the uniformity of the volume of the root system (34.7% of the variation in the variety of Ribes rubrum and 36.3% in Nenaglyadnaya), the length of the root system (average grades 10.6 cm). A two-factor analysis of variance shows a significant effect of the use of drugs and varietal characteristics on the volume of the root system (81% and 11%, respectively), and the length of the roots is significantly affected only by the use of preparations (the share of influence is 93%).

Keywords: red currant, Ribes rubrum, cuttings, reproduction, rooting ability, biological products, Trichoderma viride, Pseudomonas fluorescens.

Введение

Смородина красная (Ribes rubrum L.) относится к ягодным культурам, обладающим высокой пищевой ценность, благодаря своему химическому составу. В среднем красная смородина содержит до 1% углеводов, до 14,8% органических кислот, до 3,4% пектиновых веществ, а также биологически активные вещества [1].

Продукция переработки ягод красной смородины на данный момент только набирает популярность в нашей стране. Исходя из литературных источников, замораживание ягод красной смородины позволяет максимально сохранить в них исходные вещества, в том числе и биологически активные, обладающие антиоксидантной природой, что обусловливает их значимость в питании [2]. Например, новое направление использования замороженных ягод красной смородины – изготовление льдов пищевых сладких [3].

Смородину красную в основном размножают вегетативно. Зачастую для размножения применяют метод зеленого черенкования, чтобы получить высокий коэффициент размножения и свободный от стеблевой галлицы (Cecidomyiidae), стеклянницы материал (Aegeria tipuliformis) [4]. Однако данный метод размножения достаточно затратный, так как требуется туманообразующая установка, теплица и обученный персонал, а высокий выход посадочного материала получается далеко не у всех сортов. Корневые гнили и прочие грибковые заболевания также могут присутствовать в теплице с учетом высокой влажности и температуры, которая способствует размножению вредоносных микроорганизмов. Поэтому вопрос на тему размножения красной смородины на сегодняшний день остается открытым [5].

Технология одревесневшего черенкования основывается на способности растений к регенерации. Некоторые сорта и культуры нуждаются в обработке стимуляторами роста для увеличения коэффициента размножения, а некоторые, наоборот, лучше укореняются без вмешательства препаратов. И в том, и в другом случае, на этапе укоренения могут возникать очаги заражения бактериальными и грибными заболеваниями.

 Растения имеют огромный потенциал самозащиты, выделяя через корневую систему вместе с экссудатами группы антибиотико-подобных веществ. Экссудатами являются низкомолекулярные соединения, выделяющиеся корневой системой растения, содержащие сахара, органические кислоты, аминокислоты и продукты первичного и вторичного метаболизма. Выделяется этих компонентов достаточно большое количество, до 30 % того, что клетка синтезирует. Каждое растение выделяет одни и те же соединения, но в разных пропорциях, тем самым начиная формировать вокруг себя биоту.

Стоит упомянуть, что переносчиками бактерий является вода, а переносчиками грибных спор является воздух. Почвенные организмы начинаются активизироваться при температуре 20℃. 95% микроорганизмов и патогенов проникают через прикорневую зону, они начинают расти, потреблять питательные вещества и воду.

Растение начинает выделять экссудаты, микроорганизмы активно реагируют на выделение даже минимальных концентраций и размножаются. У каждого патогена своя скорость роста, и, как правило, чем он вредоноснее, тем быстрее размножается. Например, Fusarium преодолевает 4 см за двое суток [6].

Зачастую несоблюдение агротехники и избыточный полив приводит к поражению черенков корневыми гнилями, по причине снятия диффузионных ограничений. Поле колонизации корневой системы фитопатогеном, растение развивается без повреждений, так как оно обеспечивает жизнедеятельность микроорганизма. Процесс поражения начинается при окончании выделения экссудатов растением. Причины могут быть разные, например стрессовые ситуации, которые ослабляют фотосинтез. Вот это период фитопатоген начинает выделять токсичные вещества, которые нейтрализуют часть растения, далее ферменты, и микроорганизмы попадают либо в клетки, либо в межклеточное пространство.

Через листовой аппарат в основном попадает грибная микрофлора. Спора, которая сорбируется на поверхности листового аппарата, не наносит вред растению без попадания воды, в этом случае спора начинает прорастать. Ростовая трубочка входит в устьице и прорастает, за счет наличия органических компонентов.

Препараты - биоинокулянты на основе Pseudomonas fluorescens и Trichoderma viride успешно применяют для улучшения биотизации растительного материала, выращенного in vitro, после пересадки в почвенную смесь [7]. Так же активно изучают влияние комбинации препаратов на корневые гнили [8].

Целью нашего исследования является сравнение влияния биопрепаратов МИКС ТРИКС Триходерма и МИКС ТРИКС Псевдоманада на укореняемость и развитие одревесневших черенков красной смородины.

Материалы и методика

Исследование по черенкованию проводили в 2021 году в питомнике LOVe Berry (Московская область). В качестве объектов для тестирования препаратов выбраны 2 сорта красной смородины - Голландская розовая и Ненаглядная. Предметом изучения стали комбинации биопрепаратов МИКС ТРИКС Триходерма (клетки грибов Trichoderma viride в концентрации (титр) не менее 1*10⁷ КОЕ/г, хитозан, торф, органические компоненты) и МИКС ТРИКС Псевдомонада (клетки бактерий Pseudomonas fluorescens в концентрации не менее 1*10⁹ КОЕ/мл, органические компоненты).

Черенки для опыта нарезали в конце апреля с пятилетних маточников, половину черенков замочили в воде на 8 часов, а вторую часть - на такое же количество времени поместили в жидкий препарат МИКС ТРИКС Псевдомонада (100 мл/10 л). Затем все черенки опудрили порошком препарата МИКС ТРИКС Триходерма и высадили в ящики (схема посадки 7 х 10 см), заполненные торфом. Влажность субстрата поддерживали на уровне 70–80 %. В сентябре проводили измерения признаков, для этого отмывали корни от субстрата, затем погружали в колбу объемом 50 мл, методом вытеснения жидкости определяли объем корневой системы, а затем измеряли длину корней. Повторность опыта четырехкратная.

Для проведения статистических расчетов воспользовались пакетом Microsoft Excel. Укореняемость черенков рассчитали, как отношение укоренившихся черенков к общему количеству черенков в данном варианте опыта. Установили средние арифметические признаков с учетом доверительного интервала, где критерий t-Стьюдента = 1,96 с вероятностью 95%, т.к. объем каждой выборки был более 30 единиц укоренившихся черенков [9]. Установили интервалы для модальных классов переменных значений признаков. Определили коэффициенты вариации в выборках, применив стандартный расчет вычисления корня из дисперсии. Уровни вариации распределили, опираясь на шкалу уровней изменчивости С.А. Мамаева [10]: очень низкий уровень изменчивости составляет 7-15% вариации, средний – 16-25%, повышенный – 26-35%, высокий – 36-50% и очень высокий – более 50% вариации. Чтобы вычислить причины вариации воспользовались расчетом двухфакторного дисперсионного анализа о влиянии сорта смородины, комбинации биопрепаратов, взаимосвязи сорта и биопрепаратов. Достоверность различий определяли путем сравнения попарной разницы межгрупповых средних с НСР₀₅. 

Результаты и их обсуждение

После 5 месяцев после постановки опыта с применением двух вариантов комбинаций препаратов получили следующий результат по укореняемости черенков красной смородины:

• 47% укореняемости – показал сорт Ненаглядная при применении МТТ + вода;
• 57% - сорт Голландская розовая с использованием комбинации МТТ + вода;
• 77% - сорт Голландская розовая, комбинация биопрепаратов - МТТ + МТП;
• 80% - сорт Ненаглядная, комбинация биопрепаратов - МТТ + МТП.

Исходя из вышеописанного видно, что комбинация МТТ + МТП оказывает положительное влияние на укоренение черенков. Так же стоит отметить, что при применении этой комбинации объем корневой системы у обоих сортов выше почти в 2 раза (5,8±0,7 мл вместо 3,3±0,6 мл у сорта Голландская розовая и 8,1±1,0 мл против 3,6±0,7 мл у сорта Ненаглядная), что показано в таблице 1. По длине корневой системы подобный результат у сорта Ненаглядная - 9,4±1,0 см при применении комбинации биопрепаратов.

 

Таблица 1 – Показатели длины и объема корней у сортов смородины красной при применении биопрепаратов

Название признака	Название сорта	Комбинация препаратов	Средняя арифметическая	Коэффициент вариации признака, %
Объем корней, мл	Голландская розовая	МТТ + вода	3,3±0,6	42,8
		МТТ + МТП	5,8±0,7	34,7
	Ненаглядная	МТТ + вода	3,6±0,7	40,9
		МТТ + МТП	8,1±1,0	36,3
Длина корней, см	Голландская розовая	МТТ + вода	7,3±1,4	45,3
		МТТ + МТП	10,9±1,0	27,1
	Ненаглядная	МТТ + вода	5,5±1,5	60,1
		МТТ + МТП	9,4±1,0	32,2

 

Для производства посадочного материала важно, чтобы растения были выровнены по ряду признаков, например, по высоте надземной части саженца, а также по объему и длине корней. Достигая определенного объема корневой системы, укорененные черенки пересаживают в технические контейнеры большего размера. Если посадочный материал выровнен по данному признаку (имеет низкие коэффициенты вариации), то производственный цикл будет налажен более эффективно. В изучаемой нами выборке очень высокая вариация по длине корневой системы у сорта Ненаглядная в МТТ+вода, которая составляет 60,1%, т.е. более половины черенков значительно отличаются от средней по выборке. Самые низкие проценты изменчивости, т.е. наиболее выровненный посадочный материал по длине корневой системы отмечен у сортов Голландская розовая и Ненаглядная в МТТ + МТП (27,1 и 32,2% соответственно). По объему корневой системы так же вариация ниже в МТТ + МТП (34,7% изменчивости объема корневой системы от средней арифметической в выборке у сорта Голландская розовая и 36,3% - у сорта Ненаглядная.

Чтобы понять причины вариации признаков мы применили двухфакторные дисперсионные анализы. Выяснили, что на объем корневой системы оказывают достоверное влияние применяемые препараты (доля влияния 81%) и сортовые особенности красной смородины (11%). Взаимодействие двух факторов влияет на 4 %, но только с вероятностью 95%, а с вероятностью 99% такое влияние не подтвердилось.

В среднем объем корневой у сорта Голландская розовая составляет 4,6 мл, что достоверно меньше чем у сорта Ненаглядная - 6,1 мл (попарная разница меньше НСР₀₅=1,0). При применении комплекса МТТ + вода в среднем у растений объем корневой системы составляет 3,5 мл, что вновь достоверно меньше, чем при МТТ + МТП (7,2 мл, НСР₀₅=1,0).

На длину корневой системы достоверно влияют только препараты – доля влияния 93%. Корневая система при применении комплекса биопрепаратов МТТ + МТП длиннее и составляет в среднем 10,6 см, что является достоверно отличимым от результата использования МТТ + вода (6,5 см, НСР₀₅=1,6).

Подобное влияние воздействия комбинации препаратов на основе Pseudomonas fluorescens и Trichoderma viride отмечено в работе Indravathi 2019 [11], где они наблюдали максимальный процент выживаемости растений (82%) Albizia amara, выращенных in vitro, а также отметили увеличение длины корней, количества боковых корней, длины побега, количества листьев и биомассы растений.

Практическое значение нашего исследования заключается в том, что изученный опыт может быть применен в российском питомниководстве с целью повышения укореняемости и жизнедеятельности черенков.

К новизне работы можно отнести то, что работ по изучению влияния комбинации исследуемых нами препаратов на укореняемость черенков красной смородины пока еще не проводили, хотя это направление является перспективным на наш взгляд, так как множество черенков смородины красной погибает на этапе укоренения в том числе и от поражения вредоносными микроорганизмами. 

Выводы

Проведено сравнение влияния биопрепаратов МИКС ТРИКС Триходерма и МИКС ТРИКС Псевдомонада на укореняемость и развитие одревесневших черенков красной смородины. Достоверно доказано влияние комплекса препаратов на объем (81%) и длину (93%) корневой системы.

При применении комплекса препаратов МТТ + МТП объем корневой системы сортов смородины Голландская розовая (5,8±0,7 мл) и Ненаглядная (8,1±1,0 мл) значительно отличается от варианта с использованием МТТ + вода (3,3±0,6 мл / 3,6±0,7 мл соответственно).

У сорта Ненаглядная при применении комплекса препаратов МТТ+МТП коэффициент вариации признака длины корней составляет 32,2%; коэффициент вариации признака объема корней – 36,3%, в сравнении с использованием препарата МТТ + вода (60,1% / 40,9 % соответственно).

У сорта Голландская розовая при комбинировании препаратов МТТ+МТП коэффициент вариации признака длины корней составляет 27,1%; коэффициент вариации признака объема корней – 34,7%.

Следовательно, при низком коэффициенте вариации признака, более перспективен равный поэтапный производственный процесс.

Рекомендовано использовать комплекс препаратов МИКС ТРИКС Триходерма и МИКС ТРИКС Псевдомонада для повышения коэффициента укореняемости черенков красной смородины, а также с целью защиты от различных патогенов.

Финансирование Работа выполнена в рамках госзадания ГБС РАН «Биологическое разнообразие природной и культурной флоры: фундаментальные и прикладные вопросы изучения и сохранения», номер госрегистрации 18-118021490111-5.	Funding The research was carried out within the framework of the state task of the Tsytsin Main Moscow Botanical Garden of Academy of Sciences "Biological diversity of natural and cultural flora: fundamental and applied issues of study and conservation", state registration number 18-118021490111-5.
Конфликт интересов Не указан.	Conflict of Interest None declared.

Список литературы / References

1. Тяпкина Е.В. Технологическая пригодность ягод красной смородины / Е.В. Тяпкина, Н.И. Давыденко, О.В. Голуб // Инновационные технологии пищевых производств. Сборник тезисов докладов II Всероссийской научно-практической конференции студентов, аспирантов и молодых ученых / Под ред. Н.И. Покинтелицы, Ю.О. Веляева. 2020, с. 53-55, 2020
2. Макарова Н.В. Влияние замораживания на антиоксидантную активность ягод / Н.В. Макарова, А.Д. Стрюкова, А.В. Чигирева // Сырье и добавки. №5, с. 46, 2012
3. Лобачева Е.М. Применение ягод красной смородины в качестве основы льдов пищевых / Е.М. Лобачева, Н.И. Давыдеко, О.В. Голуб и др. // Индустрия питания». Т.6, №1, 2021
4. Голод Т.А. Оценка сортов красной смородины на технологичность размножения зелеными черенками / Т.А. Голод, Г.П. Атрощенко // Роль молодых ученых и исследователей в решении актуальных задач АПК. С. 37-39, 2019.
5. Ладыженская О.В. Выращивание саженцев смородины красной (Ríbes rúbrum L.) в контейнерной технологии с использованием удобрений Osmocote и ОМУ / О.В. Ладыженская, Т.С. Аниськина, В.А. Крючкова // АгроЭкоИнфо. – 2021. - № 5
6. Журавлева А.С. Исследование особенностей развития Fusarium Oxysporum на легко- и труднодоступном субстратах / А.С. Журавлева, А.А. Шагаев, А.Б. Горюнова и др. // Успехи в химии и химической технологии. №11.
7. Rajeswari P. Combination of Trichoderma viride and Pseudomonas fluorescens for the enhanced control of Fusarium wilt disease caused by Fusarium oxysporum infecting Arachis hypogaea L. / P. Rajeswari // Journal of Applied and Natural Science. – 2019. – 11 (1). – 138-143.
8. Vinothini K. In vitro efficacy various isolates of trichoderma viride and pseudomonas fluorescens against macrophomina phaseolina causing sesame root rot. / K. Vinothini, P. Renganathan, P. Balabaskar et al. // Plant Archives. – 2020. – 20. - 1163-1168
9. Исачкин А.В. Алгоритмы определения достаточных объемов выборок (на примере садовых растений) / А.В. Исачкин, В.А. Крючкова // Бюллетень Главного ботанического сада. – 2020. – №4. – 68-78.
10. Мамаев С.А. Основные принципы методики исследования внутривидовой изменчивости древесных растений / С.А. Мамаев // Индивидуальная и эколого-географическая изменчивость растений. – Свердловск, 1975. С. 3–14 (1975)
11. Indravathi G. Enhancing acclimatization of tissue cultured plants of Albisia amara by biotization / G. Indravathi, Baby // International journal of scintific research in biological science. – 2019. – 6 (4). – 43-50.

Список литературы на английском языке / References in English

1. Tjapkina E.V. Tehnologicheskaja prigodnost' jagod krasnoj smorodiny. Innovacionnye tehnologii pishhevyh proizvodstv. Sbornik tezisov dokladov II Vserossijskoj nauchno-prakticheskoj konferencii studentov, aspirantov i molodyh uchenyh. [Technological Suitability of Red Currant Berries. Innovative Technologies of Food Production. Collection of Abstracts of the II All-Russian Scientific and Practical Conference of Students, Postgraduates and Young Scientists.] Edited by N.I. Pokintelica, Ju.O. Veljaev. 2020, pp. 53-55, 2020 [in Russian]
2. Makarova N.V. Vlijanie zamorazhivanija na antioksidantnuju aktivnost' jagod [The Effect of Freezing on the Antioxidant Activity of Berries]. / N.V. Makarova, A.D. Strjukova, A.V. Chigireva // Zhurnal «Syr'e i dobavki» [Raw Materials and Additives Magazine] №5, p. 46, 2012 [in Russian]
3. Lobacheva E.M. Primenenie jagod krasnoj smorodiny v kachestve osnovy l'dov pishhevyh [The Use of Red Currant Berries as the Basis of Food Ice]. / E.M. Lobacheva, N.I. Davydeko, O.V. Golub et al. // Zhurnal «Industrija pitanija» [“Food Industry” Magazine]. Vol. 6, №1, 2021 [in Russian]
4. Golod T.A. Ocenka sortov krasnoj smorodiny na tehnologichnost' razmnozhenija zelenymi cherenkami [Evaluation of Red Currant Varieties on the Technological Effectiveness of Reproduction by Green Cuttings]. / T.A. Golod, P. Atroshhenko // Rol' molodyh uchenyh i issledovatelej v reshenii aktual'nyh zadach APK [The Role of Young Scientists and Researchers in Solving Urgent Problems of the Agro-Industrial Complex]. pp. 37-39, 2019 [in Russian]
5. Ladyzhenskaja O.V. Vyrashhivanie sazhencev smorodiny krasnoj (Ríbes rúbrum L.) v kontejnernoj tehnologii s ispol'zovaniem udobrenij Osmocote i OMU [Growing Seedlings of Red Currant (Ríbes Rúbrum L.) In Container Technology Using Osmocote and WMD Fertilizers] / O.V. Ladyzhenskaja, T.S. Anis'kina, V.A. Krjuchkova // AgroJekoInfo. – 2021. - № 5 [in Russian]
6. Zhuravleva A.S. Issledovanie osobennostej razvitija Fusarium Oxysporum na legko- i trudnodostupnom substratah [Investigation of the Features of Fusarium Oxysporum Development on Easy and Hard-To-Reach Substrates]. / A.S. Zhuravleva, A.A. Shagaev, A.B. Gorjunova et al. // Zhurnal «Uspehi v himii i himicheskoj tehnologii» [“Advances in Chemistry and Chemical Technology” Magazine]., №11, 2020 [in Russian]
7. Rajeswari P. Combination of Trichoderma viride and Pseudomonas fluorescens for the enhanced control of Fusarium wilt disease caused by Fusarium oxysporum infecting Arachis hypogaea L. / P. Rajeswari // Journal of Applied and Natural Science. – 2019. – 11 (1). – 138-143.
8. Vinothini K. In vitro efficacy various isolates of trichoderma viride and pseudomonas fluorescens against macrophomina phaseolina causing sesame root rot. / K. Vinothini, P. Renganathan, P. Balabaskar et al. // Plant Archives. – 2020. – 20. - 1163-1168
9. Isachkin A.V. Algoritmy opredelenija dostatochnyh ob'emov vyborok (na primere sadovyh rastenij) [Algorithms for Determining Sufficient Sample Volumes (Based on Garden Plants)] / A.V. Isachkin, V.A. Krjuchkova // Bjulleten' Glavnogo botanicheskogo sada [Bulletin of the Main Botanical Garden]. – 2020. – №4. – 68-78. [in Russian]
10. Mamaev S.A. Osnovnye principy metodiki issledovanija vnutrividovoj izmenchivosti drevesnyh rastenij [Basic Principles of the Methodology for the Study of Intraspecific Variability of Woody Plants] / S.A. Mamaev // Individual'naja i jekologo-geograficheskaja izmenchivost' rastenij [Individual and Ecological-Geographical Variability of Plants]. – Sverdlovsk, 1975. pp. 3–14 (1975) [in Russian]
11. Indravathi G. Enhancing acclimatization of tissue cultured plants of Albisia amara by biotization / G. Indravathi, Baby // International journal of scintific research in biological science. – 2019. – 6 (4). – 43-50.