Антибиотикорезистентность микрофлоры кузнечиков

Битков М. П.; Лыков И. Н.

doi:10.23670/IRJ.2022.125.107

Антибиотикорезистентность микрофлоры кузнечиков

Научная статья

Битков М. П.

DOI:

https://doi.org/10.23670/IRJ.2022.125.107

Выпуск: № 11 (125), 2022

Предложена:

30.10.2022

Принята:

09.11.2022

Опубликована:

17.11.2022

1408

6

XML

PDF

Аннотация

Прямокрылые, включая как короткорогих, так и длиннорогих кузнечиков, являются ключевыми травоядными в пастбищных экосистемах по всему миру и являются одной из наиболее важных групп насекомых с экологической и экономической точек зрения. В статье рассматривается устойчивость микроорганизмов кузнечиков к антибиотикам и значение кузнечиков как резервуаров антибиотико-резистентных микроорганизмов. Установлена относительная схожесть микрофлоры исследованных кузнечиков, что, вероятно, связано с местом их обитания и тесным взаимодействием с растительной микрофлорой. У кузнечиков чаще всего встречаются Proteobacteria spp., Enterobacte spp., Lactococcus spp. и Bacillus spp. Показано, что микроорганизмы исследованных кузнечиков обладают мультирезистентностью к использованным антибиотикам. Наибольшей мультирезистентностью отличаются такие виды, как Bacillus spp. и Enterobacter spp. Чаще всего исследованные кузнечики обладали устойчивостью к фосфомицину, оксациллину, кларитромицину, линкомицину и тобрамицину. Наши исследования показывают, что кузнечики действуют как резервуары антибиотико-резистентных микроорганизмов, которые они впоследствии распространяют в окружающей среде, реализуя горизонтальный перенос генов.

Ключевые слова:

прямокрылые насекомые, кузнечики, микроорганизмы, антибиотики, резистентность.

1. Введение

Кузнечики относятся к прямокрылым и являются основными травоядными в глобальной пастбищной экосистеме. Они имеют огромное экологическое и экономическое значение. Травоядные кузнечики используют свои кишечные бактерии для извлечения питательных веществ из неперевариваемых тканей растений [1]. Из-за потребления большого количества растительной биомассы кузнечики являются наиболее важными первичными потребителями и играют важную роль в поддержании экологического баланса [2]. Кузнечики также считаются ключевым индикатором стабильности пастбищных экосистем, особенно в местах обитания, находящихся под угрозой исчезновения, таких как луга [1].

Насекомые связаны с множеством различных микробов, роль которых в формировании взаимодействия насекомых и растений мы только начинаем понимать. Помимо прямой выгоды от симбиотического микробного метаболизма, насекомые получают и передают микробы в окружающей среде, что делает их идеальными переносчиками и потенциальными бенефициарами болезней растений и микробов, которые изменяют защитные свойства растений [3].

Взаимоотношения с микробными симбионтами наблюдаются у многих насекомых. Они имеют решающее значение для их выживания и развития. Эндосимбионты могут оказывать глубокое влияние на экологию и эволюцию насекомых и управлять совместной эволюцией растений и травоядных [4]. Но эндосимбионты могут быть носителями генов устойчивости к антибиотикам. Устойчивость к противомикробным препаратам является глобальной проблемой для здоровья, как животных, так и людей. Микроорганизмы способны реализовывать биохимические механизмы и генетические процессы, которые снижают эффективность антибиотиков [5], [6].

Инфекции, вызванные бактериями с множественной лекарственной устойчивостью, представляют собой растущую проблему из-за появления и распространения резистентности микробов к лекарственным препаратам и отсутствия разработки новых противомикробных препаратов.

Устойчивость к антибиотикам развивается в результате воздействия антимикробных агентов на популяции и сообщества бактерий. Аналогичный обмен на генетическом уровне происходит между антибиотико-резистентными микроорганизмами, попавшими в окружающую среду, и естественной бактериальной микрофлорой [7], [8], [9].

Бактерии выработали древние механизмы, позволяющие противостоять воздействию молекулы антибиотика. Устойчивость к антибиотикам кодируется несколькими генами, многие из которых могут передаваться между бактериями [10], [11], [12].

Таким образом, насекомые представляют собой возможный путь распространения детерминант устойчивости к антибиотикам в окружающей среде. Поэтому целью и задачами настоящего исследования является изучение микрофлоры кузнечиков и определение ее резистентности к антибиотикам.

2. Объекты и методы исследования

Объектами исследования служили следующие прямокрылые насекомые (n=10):

· Кузнечик серый (Decticus verrucivorus).

· Певчий кузнечик (Tettigonia cantans).

· Кузнечик Резеля (Metrioptera Roeselii).

· Кустолюбка пепельная (Pholidoptera Griseoaptera).

Насекомых вылавливали в парках, в луговых и лесных массивах. Пойманных насекомых стерильным пинцетом помещали в стерильные пробирки и выдерживали в течение 3 часов. После этого насекомых выпускали.

В лабораторных условиях в каждую пробирку заливали по 5 мл стерильного физиологического раствора. После встряхивания из каждой пробирки переносили стерильной пипеткой по 1 мл физиологического раствора в 2 пустые стерильные чашки Петри, которые заливали питательным агаром, остуженным до 40–45ОС. После застывания среды чашки переворачивали кверху дном и термостатировали при температуре 30ОС в течение 48 часов. Выделенные из образцов бактерии идентифицировали стандартными микробиологическими методами на основании их морфологических и биохимических характеристик, а также методом масс-спектрометрии на анализаторе MALDI-TOF MS autoflex speed (фирма Bruker).

Определение чувствительности бактерий к антибиотикам осуществляли диффузионным методом с использованием дисков, пропитанных антибиотиками (табл. 1).

Таблица 1 - Перечень использованных антибиотиков

DOI:10.23670/IRJ.2022.125.107.1

№ п/п	Наименование	Концентрация, мкг	Обозначение
1	Оксациллин	10	ОКС
2	Кларитромицин	15	KTM
3	Бензилпенициллин	10	ПЕН
4	Тобрамицин	30	ТОВ
5	Фуразолидон	5	ФРН
6	Доксициклин	30	ДОК
7	Ломефлоксацин	5	ЛОМ
8	Фосфомицин	200	ФОС
9	Олеандомицин	15	ОЛЕ
10	Неомицин	30	НЕО
11	Тетрациклин	30	TET
12	Ампициллин	10	AMP
13	Левомицетин	30	ЛЕВ
14	Линкомицин	15	ЛИН

После инкубации были измерены зоны ингибирования роста микроорганизмов (табл. 2).

Таблица 2 - Оценка чувствительности микроорганизмов к антибиотикам по зоне задержки роста

DOI:10.23670/IRJ.2022.125.107.2

Уровни устойчивости к антибиотику	Диаметр зон ингибирования роста, мм
Высокий	> 25
Средний	от 16 до 25
Низкий	<15

Статистическую обработку результатов исследования проводили с использованием табличного процессора Microsoft Excel.

3. Результаты и обсуждение

Общими для всех видов кузнечиков были Lactobacillus spp., Enterobacter spp., Bacillus spp. и Enterococcus spp. У некоторых кузнечиков были выделены Actinobacteria spp., Proteobacteria spp. и Firmicutes spp.

Общее количество микроорганизмов, выделенных из кузнечиков, варьировало от 10×4 КОЕ до 10×6 КОЕ. Исследования показали относительную схожесть микрофлоры исследованных насекомых (табл. 3). На это, вероятно, влияет связь микробиоты насекомых с местом обитания и тесным взаимодействием с растительной микрофлорой.

Таблица 3 - Микробный пейзаж кузнечиков

DOI:10.23670/IRJ.2022.125.107.3

Наименование насекомых	Общее количество микроорганизмов, КОЕ	Выделенные микроорганизмы
Decticus verrucivorus	10×6	Lactobacillus spp., Enterobacter spp., Bacillus spp., Enterococcus spp., Actinobacteria spp., Proteobacteria spp.
Tettigonia cantans	10×4	Lactobacillus spp., Enterobacter spp., Bacillus spp., Enterococcus spp., Proteobacteria spp., Firmicutes spp.
Metrioptera Roeselii	10×5	Lactobacillus spp., Enterobacter spp., Bacillus spp., Enterococcus spp., Proteobacteria spp., Firmicutes spp., Actinobacteria spp.
Pholidoptera Griseoaptera	10×4	Lactobacillus spp., Enterobacter spp., Bacillus spp., Enterococcus spp., Proteobacteria spp.

Соотношение микроорганизмов, входящих в микробиом кузнечиков, отличается более выраженным представительством Lactobacillus spp., Enterobacter spp, Bacillus spp., Enterococcus spp. (рис. 1).

Рисунок 1 - Соотношение представителей микрофлоры, входящей в микробиом кузнечиков

Чаще всего исследованные кузнечики обладали устойчивостью к фосфомицину, оксациллину, кларитромицину, линкомицину, ампициллину, бензилпенициллину, олеандомицину и тобрамицину. Уровень резистентности изолятов к антибиотикам варьировал у кузнечиков от 14,3% до 78,6% (рис. 2).

Рисунок 2 - Уровень резистентности кузнечиков к антибиотикам

Выделенные микроорганизмы в той или иной степени обладали мультирезистентностью к исследованным антибиотикам. Наибольшей мультирезистентностью отличались такие виды, как Bacillus spp., Enterobacter spp., Lactobacillus spp. Enterobacter spp. В то же время Enterococcus spp., Proteobacteria spp., Firmicutes spp. и Actinobacteria spp. проявляли наибольшую чувствительность к бензилпенициллину, доксициклину, кларитромицину, левомицетину, линкомицину, неомицину, оксациллину и олеандомицину (рис. 3).

Рисунок 3 - Антибиотикограмма резистентности микрофлоры кузнечиков

Таким образом, наши исследования подтверждают предположение о том, что насекомые могут быть потенциальными распространителями микроорганизмов, резистентных к антибиотикам.

4. Заключение

1. Общими для всех видов кузнечиков были Lactobacillus spp., Enterobacter spp., Bacillus spp. и Enterococcus spp.

2. Общее количество микроорганизмов, выделенных из кузнечиков, варьировало от 10×4 КОЕ до 10×6 КОЕ.

3. Соотношение микроорганизмов, входящих в микробиом кузнечиков, отличается более выраженным представительством Lactobacillus spp., Enterobacter spp, Bacillus spp., Enterococcus spp.

4. Чаще всего исследованные кузнечики обладали устойчивостью к фосфомицину, оксациллину, кларитромицину, линкомицину, ампициллину, бензилпенициллину, олеандомицину и тобрамицину.

5. Уровень резистентности изолятов к антибиотикам варьирует у кузнечиков от 14,3% до 78,6%.

Дополнительные материалы

Не указаны

Финансирование

Авторы не получали финансовой поддержки для проведения исследования, написания и публикации статьи

Благодарности

Авторы благодарят сотрудников Института биохимии и физиологии микроорганизмов им. Г. К. Скрябина (РАН) за оказанную помощь в идентификации выделенных микроорганизмов методом масс-спектрометрии

Конфликт интересов

Не указаны

Список литературы

Muratore M. The gut bacterial communities across six grasshopper species from a coastal tallgrass prairie / M. Muratore, C. Prather, Y. Sun // PLoS One. – 2020. – Vol. 15(1). – P. e0228406. – DOI: 10.1371/journal.pone.0228406.
Sun T. Grasshopper (Orthoptera: Acrididae) Community Composition in the Rangeland of the Northern Slopes of the Qilian Mountains in Northwestern China / T. Sun, Z.Y. Liu, L.P. Qin et al. // Journal of Insect Science. – 2015. – Vol. 15. – Iss. 1. – Р. 6. – DOI: 10.1093/jisesa/ieu171.
Coolen S. The secret life of insect-associated microbes and how they shape insect-plant interactions / S. Coolen, R.D. Magda, C.U. Welte // FEMS Microbiol Ecol. – 2022. – Vol. 98(9). – P. fiac083. – DOI: 10.1093/femsec/fiac083.
Лыков И.Н. Микроорганизмы: Биология и экология / И.Н. Лыков, Г.А. Шестакова. – Калуга : СерНа, 2014. – 451 с.
Dunachie S.J. The challenges of estimating the human global burden of disease of antimicrobial resistant bacteria / S.J.Dunachie, N.Pj. Day, Ch. Dolecek // Curr. Opin. Microbiol. – 2020. – Vol. 57. – Р. 95–101. – DOI: 10.1016/j.mib.2020.09.013.
Paniagua V.L.R. Bacterial Symbionts in Lepidoptera: Their Diversity, Transmission, and Impact on the Host / V.L.R. Paniagua, E. Frago, M. Kaltenpoth et al. // Front Microbiol. – 2018. – Vol. 9. – Р. 556. – DOI: 10.3389/fmicb.2018.00556.
Лыков И.Н. Медико-экологические аспекты лекарственной устойчивости бактерий, выделенных от домашних животных и их владельцев / И.Н. Лыков, И.Е. Галемина, Н.С. Зайцева и др. // Проблемы региональной экологии. – 2021. – № 5. – С. 37–41. – DOI: 10.24412/1728-323X-2021-5-37-41
Лыков И.Н. Медико-экологические аспекты присутствия в воздухе антибиотико-резистентных микроорганизмов / И.Н. Лыков, Н.Т. Гулдорава, Е.В. Ковалева // Экология урбанизированных территорий. – 2020. – № 4. – С. 20–25. – DOI: 10.24412/1816-1863-2020-4-20-25
Russell A.D. Antibiotic and biocide resistance in bacteria: introduction / A.D. Russell // J. Appl. Microbiol. – 2002. – № 92(1). – P. 1S-3S. – DOI: 10.1046/j.1365-2672.92.5s1.14.x
Lykov I.N. Research of antibiotic resistance of microorganisms isolated from fruits and vegetables / I.N. Lykov, M.A. Kakharova, V.S. Kureber et al. // IOP Conf. Series: Earth and Environmental Science 839 (2021) 042003 IOP Publishing. – 2021. –DOI:10.1088/1755-1315/839/4/042003
Andam C.P. Multilevel populations and the evolution of antibiotic resistance through horizontal gene transfer / C.P. Andam, G.P. Fournier, J.P. Gogarten // FEMS Microbiol. Rev. – 2011. – Vol. 35. – Р. 756–767. – DOI: 10.1111/j.1574-6976.2011.00274.x
Cenci-Goga B.T. Cross-sectional study to identify risk factors associated with the occurrence of antimicrobial resistance genes in honey bees Apis mellifera) in Umbria, Central Italy / B.T. Cenci-Goga, P. Sechi, M. Karama et al. // Environ Sci Pollut Res Int. – 2020. – Vol. 27(9). – Р. 9637–9645. – DOI: 10.1007/s11356-020-07629-3

Рецензия

Все статьи проходят рецензирование. Но рецензент или автор статьи предпочли не публиковать рецензию к этой статье в открытом доступе. Рецензия может быть предоставлена компетентным органам по запросу.

Информация об авторах

Аффилиация:Калужский государственный университет им. К.Э. Циолковского, Калуга, Российская Федерация

Роль:Автор, Методология, Руководство, Написание, проверка и редактирование

ORCID:0000-0002-5326-0442

Аффилиация:Калужский государственный университет им. К.Э. Циолковского, Калуга, Российская Федерация

Роль:Автор

Метрика статьи

Скачиваний:6

ПросмотрыСкачивания

Просмотры

Всего: